Vous avez cherché Hervé Avet- Loiseau - Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse https://www.crct-inserm.fr/ Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse Mon, 08 Jan 2024 13:37:22 +0000 fr-FR hourly 1 https://wordpress.org/?v=6.4.4 https://www.crct-inserm.fr/wp-content/uploads/2020/11/cropped-favicon-32x32.png Vous avez cherché Hervé Avet- Loiseau - Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse https://www.crct-inserm.fr/ 32 32 Focus recherche 2022 équipe GENIM https://www.crct-inserm.fr/focus-recherche-2022-equipe-genim/ Mon, 02 Oct 2023 09:04:28 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=57743 L’article Focus recherche 2022 équipe GENIM est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Focus recherche 2022 équipe GENIM

Prix Robert A. Kyle

En juin 2022, le professeur Hervé Avet-Loiseau s’est vu décerner le prestigieux Robert A. Kyle Achievement Award par l’International Myeloma Foundation (IMF) pour sa contribution majeure à l’étude du myélome. Ce prix porte le nom du Dr Kyle, qui en a été le premier récipiendaire en 2002. En 20 ans, seuls deux autres Français ont reçu ce prix avant le Pr Hervé Avet-Loiseau. Le FMI récompense les travaux de recherche basés sur l’analyse des anomalies génétiques/génomiques observées dans les plasmocytes malins, à l’aide de diverses techniques et technologies, notamment l’hybridation fluorescente in situ (FISH), le profilage de l’expression des gènes, les puces à polymorphisme mononucléotidique (SNP) et le séquençage de nouvelle génération (NGS). Pour en savoir plus

Pour découvrir l’ensemble des focus recherche de l’IUCT-Oncopole et du CRCT-Oncopole merci de cliquer ici. (en anglais uniquement)

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Cancer : un mécanisme clé pour améliorer les immunothérapies identifié par une équipe toulousaine https://www.crct-inserm.fr/cancer-un-mecanisme-cle-pour-ameliorer-les-immunotherapies-identifie-par-une-equipe-toulousaine/ Fri, 30 Jun 2023 09:33:01 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=56515 L’article Cancer : un mécanisme clé pour améliorer les immunothérapies identifié par une équipe toulousaine est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Cancer : un mécanisme clé pour améliorer  les immunothérapies identifié par une équipe toulousaine

Cancer,

Immunologie,

Immunothérapie,

Lymphocytes,

Epuisement.

Une équipe du Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse, dirigée par le Dr Ludovic Martinet, vient de publier dans la revue scientifique « Immunity » une étude* qui ouvre des perspectives pour améliorer l’efficacité de l’immunothérapie. La présence d’une molécule, le CD137, à la surface des lymphocytes tueurs infiltrant le cancer serait l’une des clés pour augmenter le nombre de ces cellules immunes dans le cancer .

 

Les lymphocytes T « tueurs » représentent les acteurs du système immunitaire les plus prometteurs dans la lutte contre le cancer. Toutefois, ces lymphocytes T sont souvent sujets à l’épuisement en cas de cancer. Cet état d’épuisement, qui fait suite à la stimulation répétée de ces lymphocytes, diminue considérablement leurs fonctions et les empêche de tuer les cellules cancéreuses. Ce mécanisme est commun à divers cancers et maladies infectieuses et la revitalisation des lymphocytes tueurs épuisés est un enjeu thérapeutique majeur.  La recherche s’intéresse à la manière d’y parvenir par le biais de nouveaux traitements, l’immunothérapie qui se fonde notamment sur l’utilisation d’anticorps monoclonaux. L’immunothérapie a pour but de “revitaliser” les lymphocytes tueurs épuisés des patients pour qu’il élimine les cellules cancéreuses. Malheureusement si l’immunothérapie peut conduire à cette revitalisation des lymphocytes épuisés et la guérison de nombreux malades atteints de cancer, elles fonctionnent de manière inégale d’un patient à l’autre Il est donc nécessaire de mieux comprendre les mécanismes qui permettent de stimuler les lymphocytes épuisés dans les cancers.

La nouvelle étude menée par le chercheur Inserm, Ludovic Martinet et ses collègues du Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse, en collaboration avec d’autres équipes basées en France et aux États-Unis, s’est intéressée aux mécanismes d’épuisement des lymphocytes tueurs. Dans ce travail, les chercheurs et chercheuses ont étudié les caractéristiques moléculaires des lymphocytes tueurs dans des modèles de cancers et d’infections chroniques et ont spécifiquement identifié la molécule CD137 à la surface des lymphocytes épuisés. Grâce à des approches basées sur des modèles expérimentaux de souris génétiquement déficientes pour le récepteur CD137, l’équipe de recherche du Dr Ludovic Martinet a découvert que cette molécule régule la quantité de lymphocytes épuisés dans les cancers. L’absence du CD137 conduisait à la disparition des lymphocytes tueurs dans les tumeurs et une augmentation des cellules cancéreuses épuisés. A l’inverse, la stimulation du récepteur CD137 par des anticorps agonistes permettait de favoriser l’expansion des lymphocytes épuisés au sein de la tumeur. Pour autant la stimulation du CD137 ne revitalisait pas les lymphocytes tueurs épuisés mais, en augmentant sensiblement le nombre de cellules épuisées, cette molécule permettait de favoriser la destruction des cellules cancéreuses par l’immunothérapie.

A terme, cette découverte pourrait donc conduire à la mise au point de nouveaux traitements afin de rendre plus performante l’action des immunothérapies actuelles et ainsi de guérir un plus grand nombre de patients atteints de cancer. Cela ouvre également des perspectives d’autres types de pathologies telles que les maladies virales dont on sait que les lymphocytes tueurs sont également épuisés.

Découvrir l’article publié

Immunity. 2023 Jun 27:S1074-7613(23)00264-9. doi: 10.1016/j.immuni.2023.06.007. Online ahead of print.TCR-independent CD137 (4-1BB) signaling promotes CD8+ exhausted T cell proliferation and terminal differentiation
Andrea C Pichler, Nadège Carrié, Marine Cuisinier, Samira Ghazali, Alison Voisin, Pierre-Paul Axisa, Marie Tosolini, Céline Mazzotti,, Dominic P. Golec, Sabrina Maheo,, Laura do Souto,, Rüçhan Ekren, Eve Blanquart, Lea Lemaitre, Virginie Feliu, Marie-Véronique Joubert,, Jennifer L. Cannons, Camille Guillerey, Hervé Avet-Loiseau, Tania H. Watts, Benoit L. Salomon, Olivier Joffre, Yenkel Grinberg-Bleyer, Pamela L. Schwarzberg, Liliana E. Lucca and Ludovic Martinet.

Collaborations et remerciements

Centre de recherche sur le cancer de Toulouse (CRCT), Institut national de la santé et de la recherche médicale (INSERM), Centre national de la recherche scientifique (CNRS), Université Toulouse III-Paul Sabatier (UPS), Toulouse, France.

Section Signalisation cellulaire et immunité, Laboratoire de biologie du système immunitaire, Institut national des allergies et des maladies infectieuses, Instituts nationaux de la santé, Bethesda, MD.

Institut Universitaire du Cancer, CHU Toulouse, Toulouse France.

Institut de Toulouse pour les maladies infectieuses et inflammatoires (Infinity), UPS, INSERM, CNRS, Toulouse, France.

Centre de Recherche en Cancérologie de Lyon, Labex DEVweCAN, INSERM, CNRS, Université Claude Bernard Lyon 1, Centre Léon Bérard, Lyon, France.

Cancer Immunotherapies Group, The University of Queensland, Queensland, Australie.

Département d’immunologie, Université de Toronto, Toronto, ON M5S 1A8, Canada.

Sorbonne Université, INSERM, CNRS, Centre d’Immunologie et des Maladies Infectieuses, (CIMI-Paris), Paris, France.

Cette étude a été soutenue par la Fondation ARC (PGA1-20160203788, 20180206911, 20190208630 et SIGN’IT2021), l’Institut National du Cancer (INCA ; PLBIO R16100BB, 2017-155, R19-045, R20-229,), l’Agence Nationale de la Recherche
Agence Nationale de la Recherche (ANR LABEX Toucan, AAPG 2021 R22057BB TRINDI et EUR CARe N°ANR-18-EURE-0003), par Cancer Research Institute/Bristol-Myers Squibb CLIP Grant, la Fondation Toulouse Cancer Santé, le programme de recherche translationnelle IUCT-O et l’Intergroupe Francophone du Myélome (IFM). A.C.P. a été soutenue par la Ligue contre le cancer.

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1er congrès jeunes chercheurs sur le cancer (YS2C) https://www.crct-inserm.fr/ys2c_gso-fr/ Mon, 15 May 2023 15:07:16 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=55853 L’article 1er congrès jeunes chercheurs sur le cancer (YS2C) est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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1er congrès jeunes chercheurs sur le cancer (YS2C)

Nouvelles stratégies de recherche pour les thérapies contre le cancer – de la paillasse au chevet du patient

5 octobre 2023 – Toulouse, France

L’association des post-doctorants du CRCT a été créée en 2022 par Benoît Aliaga, Chloé Bessière et Steffen Fuchs. Elle réunit les 31 postdocs travaillant actuellement dans notre centre de recherche. Nous avons décidé d’organiser le 1er congrès jeunes chercheurs sur le cancer du Cancéropôle Grand Sud Ouest (GSO) qui aura lieu le 5 octobre 2023 à l’Oncopôle de Toulouse.

Objectif : le but principal de cette journée est de promouvoir le travail de recherche des post-doctorants et des jeunes cliniciens du GSO, d’établir des collaborations et de d’améliorer leur insertion professionnelle.
Public : Afin de soutenir les jeunes chercheurs, nous avons décidé d’ouvrir le congrès à toute la communauté scientifique du GSO, soit les chercheurs et cliniciens de tout niveau d’expérience.
Organisation : Au cours de cette journée, des présentations seront assurées alternativement par des conférenciers invités de renommée internationale et par des postdocs du GSO. Une présentation sera également donnée par une compagnie leader dans le séquençage single-cell et une seconde présentation sera réalisée par une éditrice de Nature Communications sur les publications scientifiques et la préparation des révisions.

Conférenciers invités :

  • Francesco Iorio (Wellcome Sanger Institute, Cambridge / Human Technopole, Milan, Italie)
  • Olivier Delattre (Institut Curie, Paris, France)
  • Manel Esteller (Josep Carreras Leukaemia Research Institute, Barcelone, Espagne)
  • Kathryn McGinnis, Associate Editor (Nature Communications, Londres, Royaume-Uni)

Le premier congrès des jeunes scientifiques sur le cancer à Toulouse a été un énorme succès !

Nous vous remercions de votre participation à ce premier événement pionnier ! Nous aimerions partager avec vous quelques chiffres clés :

  • >240 participants
  • 70 propositions de présentations
  • >10.000€ de financement.
  • 13 sponsors industriels

C’était tout à fait inattendu pour une première édition !

Un comité d’organisation composé de postdocs de Toulouse, Bordeaux et Montpellier a été formé, ce qui favorisera de nouvelles amitiés.

Grâce aux présentations exceptionnelles de Manel Esteller, Francesco Iorio, Olivier Delattre et Kathryn McGinnis, l’amphithéâtre était bondé comme jamais auparavant (communication personnelle non publiée avec de nombreux participants).

Des discussions fantastiques ont eu lieu devant les nombreux posters ! Nous avons eu quelques présentateurs de dernière minute que nous avons été très heureux d’accueillir. Merci également à tous les cliniciens qui nous ont aidés !

Un grand merci à nos sponsors, industriels et universitaires ! C’est grâce à vous que cet événement a pu avoir lieu ! Merci à tous les bénévoles qui nous ont aidés ! Vous avez fait un travail formidable !

Nous attendons avec impatience la deuxième édition ! N’hésitez pas à nous contacter (liste.crct-postdocday@inserm.fr) si vous souhaitez y participer en tant qu’organisateur, sponsor ou simplement pour partager des idées et des réflexions ! Restez à l’écoute !

Quelques impressions de la journée :

Retrouvez les vidéos et des photos de l’événement sur la page en anglais du congrès (ils sont également disponibles sur Twitter/X et LinkedIn).

 

 

Soumission de résumés exclusivement réservée aux jeunes chercheurs :

Nous invitons tous les postdocs et jeunes cliniciens à soumettre leur résumé pour une communication orale. De plus, nous invitons les étudiants en thèse, postdocs et jeunes cliniciens à présenter un poster.
Le comité de sélection (postdocs et jeunes cliniciens du GSO) sélectionnera les meilleurs résumés pour les communications orales et les présentations poster.

Afin de communiquer votre activité pendant le congrès, merci d’utiliser notre hashtag #YS2C_GSO.

Dates clés et inscription :

  • Date limite pour la soumission des résumés pour les communications orales : 13 juillet 2023 (23 :59) 3 aout 2023 (23 :59)
  • Date limite pour la soumission des résumés pour les présentations poster : 8 septembre 2023 (23 :59)
  • Inscription (obligatoire) avant : 8 septembre 2023 (23 :59)

L’inscription est obligatoire mais gratuite pour tous les chercheurs. Merci de suivre les instructions sur le site internet du GSO.

The physician’s corner – – un espace dédié aux rencontres entre cliniciens et chercheurs

Un de nos objectifs est de rapprocher les jeunes cliniciens et chercheurs afin d’initier de potentielles nouvelles collaborations, pour favoriser la recherche translationnelle conduisant aux bénéfices des patients.
C’est dans ce contexte que nous aurons un espace dédié durant le déjeuner et la session poster « Le coin des médecins », où des discussions entre cliniciens et chercheurs pourront avoir lieu dans une atmosphère informelle. Profitez de cette opportunité et venez nombreux !

Programme préliminaire

Nouvelles stratégies de recherche pour les thérapies contre le cancer – de la paillasse au chevet du patient

8:30 Inscription + café de bienvenue
9:00 Présentation de bienvenue aux participants

Session 1: Épigénomique du cancer et au-delà

9:15-10:00 Keynote 1: Manel Esteller, Josep Carreras Leukaemia Research Institute (IJC), Barcelona, Spain “Cancer Epigenomics and Epitranscriptomics with a Single-Cell Twist.”

10:00-10:20 Présentation sélectionnée 1

10:20-10:50 Pause café

10:50-11:00 Présentation commerciale par Elodie Lallet, IntegraGen, Evry, Paris

From tumor to treatment, OncoDEEP® kit : a comprehensive oncology NGS panel including powerful bioinformatics tools

11:00-11:20 Présentation sélectionnée 2

Session 2: Les technologies single-cell et leurs applications pour disséquer l’hétérogénéité du cancer

11:20-11:40 Présentation sélectionnée 3

11:40-11:50 Présentation commerciale par Simone Formisano, Mission Bio, CA, USA
Unleashing the Power of Single-Cell Multi-Omic DNA and Immunophenotype Profiling: Revolutionizing Precision Medicine and Shaping Next-Generation Therapies

11:50-12:00 Hervé Avet-Loiseau, CRCT, IUCT-O, Toulouse, France
Early clonal study in Multiple Myeloma

12:00-14:15 Session poster, stands commerciaux (présents tout au long de la journée), déjeuner (buffet) et « Physician corner» 

Session 3: Plasticité et hétérogénéité du cancer

14:15-15:00 Keynote 2: Olivier Delattre, Institute Curie, Paris, France

“Ewing sarcoma, a paradigm for cell reprogramming in cancer”

15:00-15:20 Présentation sélectionnée 4

15:20-15:40 Présentation sélectionnée 5

15:40-16:10 Point de vue de l’éditeur : Kathryn McGinnis, Associate Editor, Nature Communications

16:10-16:40 Pause café

Session 4: Dépendances au cancer et développement de médicaments

16:40-17:00 Présentation sélectionnée 6

17:00-17:45 Keynote 3: Francesco Iorio, Wellcome Sanger Institute, Cambridge, UK; Human Technopole, Milano, Italy “Optimisation and drug-discovery oriented analyses of CRISPR-Cas9 screens.”

17:45-18:00 Remarques de fin et récompenses des présentations poster et communications orales

Icebreaker / cocktail de fin entre tous les conférenciers invités et les participants (au CRCT)

Conférenciers
Professor Manel Esteller, M.D., Ph.D.
Director, Josep Carreras Leukemia Research Institute

Manel Esteller a obtenu son diplôme de médecine à l’université de Barcelone en 1992, où il a également obtenu son doctorat spécialisé dans la génétique moléculaire du carcinome de l’endomètre en 1996. Il a été chercheur invité à l’école des sciences biologiques et médicales de l’université de St. Andrews (Écosse, Royaume-Uni), période durant laquelle ses recherches se sont concentrées sur la génétique moléculaire du cancer du sein héréditaire. De 1997 à 2001, Esteller a été chercheur postdoctoral et associé de recherche à l’université et à l’école de médecine Johns Hopkins (Baltimore, États-Unis), où il a étudié la méthylation de l’ADN et le cancer humain. Ses travaux ont été décisifs pour établir que l’hyperméthylation du promoteur des gènes suppresseurs de tumeurs est une caractéristique commune à toutes les tumeurs humaines.

D’octobre 2001 à septembre 2008, Manel Esteller a dirigé le laboratoire d’épigénétique du cancer du CNIO, où son principal domaine de recherche était les altérations de la méthylation de l’ADN, des modifications des histones et de la chromatine dans le cancer humain. Le Dr Esteller a été directeur du Programme d’épigénétique et de biologie du cancer (PEBC) à Barcelone (2008-2019). Il est directeur de l’Institut de recherche sur la leucémie Josep Carreras (IJC), président du département de génétique de la faculté de médecine de l’université de Barcelone et professeur de recherche à l’ICREA. Ses recherches actuelles sont consacrées à l’établissement de cartes de l’épigénome et de l’épitranscriptome des cellules normales et transformées, et au développement de nouveaux médicaments épigénétiques pour le traitement du cancer.

Auteur de plus de 600 publications originales dans des revues scientifiques évaluées par des pairs, dont 24 ont été classées dans la catégorie des “articles très cités”. Le Dr Esteller a le facteur d’impact total le plus élevé et le plus grand nombre de citations (81 783) parmi les scientifiques biomédicaux en Espagne. Il a un h-Index de 134 selon Web of Science – Clarivate Analytics et un h-Index de 166 selon Google Scholar. Le Dr Esteller est considéré comme faisant partie des 0,01 % des meilleurs scientifiques mondiaux en termes d’impact par l’université de Stanford (METRICS) et le Web of Science Group-Clarivate Analytics. Il est également membre de nombreuses sociétés scientifiques internationales, de comités de rédaction et examinateur pour de nombreuses revues et agences de financement. Le Dr Esteller est également rédacteur en chef adjoint pour Cancer Research, The Lancet Oncology, Carcinogenesis, Genome Research et The Journal of The National Cancer Institute. Il est le rédacteur en chef d’Epigenetics. Il est également directeur du projet The Cancer Genome Atlas (TCGA) pour le cancer de primitif inconnu (CUP) (2018-2022) du National Cancer Institute – National Institutes of Health (NCI-NIH) aux États-Unis (US) et directeur du projet The International Proteogenome Consortium (ICPC) “Proteogenomics of B-Cell Acute Lymphoblastic Leukemia” (2022-2023) également par le NCI.

Ses travaux ont reçu, entre autres, le Carcinogenesis Award (2005), le Beckman-Coulter Award (2006), le Fondazione Piemontese per la Ricerca sul Cancro (FPRC) Award (2006), le Swiss Bridge Award (2006), le Innovation Award du Commonwealth of Massachussets (2007), le Human Frontier Science Program Award (2007), le DEbiopharm-EPFL Award (2009), le Dr. Josef Steiner Cancer Research Award (2009), Lilly Foundation Preclinical Biomedical Research Award (2009), World Health Summit Award (2010), European Research Council Advanced Grant (2011), Rey Jaime I Research Award (2013), Severo Ochoa Award in Biomedicine (2014), National Award in Oncology (2014), Dr Josep Trueta Medal, Catalan Goverment (2015), National Research Award of the Catalan Goverment (2015), Médaille d’or, Parlement de Catalogne (2016), Prix international de Catalogne (2016), Prix Falcó Carlemany (2017), Innovation in Healthcare Oncology Award (2018), Lansdowne Lecture Award, Université de Victoria, Canada (2019), Médaille Narcís Monturiol, Gouvernement catalan (2020), Membre élu de l’Academia Europaea (2021) et de l’Académie européenne des sciences (2021). En 2022, sa découverte des profils d’hyperméthylation de l’ADN spécifiques à un type de cancer a été sélectionnée comme article marquant de la recherche sur le cancer par l’AACR et le National Cancer Act.

Doctor Olivier Delattre  MD, Ph.D (information will follow)
Director at Cancer, Hétérogénéité, Instabilité et Plasticité – U830 – Institut Curie

Olivier Delattre, MD, PhD, a été formé en oncologie pédiatrique et en génétique. Son domaine de recherche porte principalement sur la génétique et la biologie des cancers pédiatriques. En particulier, son laboratoire a identifié les altérations génétiques d’une variété de cancers pédiatriques, notamment le réarrangement EWS-FLI1 dans le sarcome d’Ewing, l’inactivation SMARCB1 dans les tumeurs rhabdoïdes, la mutation d’activation ALK dans le neuroblastome et la fusion BCOR-CCNB1 dans le sarcome de type Ewing. Il a également contribué à l’identification des principales mutations prédisposant aux tumeurs ou des facteurs de susceptibilité génétique dans la neurofibromatose de type II, la prédisposition au syndrome rhabdoïde, le neuroblastome et le sarcome d’Ewing. Son laboratoire s’intéresse également de près au décryptage de l’origine cellulaire des cancers pédiatriques, en particulier le sarcome d’Ewing, le neuroblastome et les tumeurs rhabdoïdes. Globalement, son laboratoire cherche à mieux comprendre l’interaction entre les anomalies génétiques et le contexte spécifique de la cellule d’origine. Olivier Delattre est membre de l’EMBO depuis 2011 et de l’Academia Europea depuis 2012. Il a reçu de nombreux prix dont le prix Eurocancer en 2007, le prix Charles Oberlin en 2009, le prix Leopold Griffuel en 2016, le Grand Prix Inserm 2022, et a récemment été honoré par le prix de l’AACR-St. Baldrick’s Foundation pour ses réalisations exceptionnelles dans la recherche sur le cancer pédiatrique.

Olivier Delattre est directeur du département Biologie et génétique du cancer Inserm U830 et directeur du centre SIREDO, un centre pédiatrique d’envergure internationale créé en 2017 à l’Institut Curie. SIREDO (Soins, Innovation et recherche pour les enfants, adolescents et jeunes adultes atteints de cancer) regroupe des chercheurs et des médecins dans les domaines de l’oncopédiatrie, de l’adolescent et du jeune adulte afin d’apporter le plus rapidement possible de nouveaux médicaments aux patients.

Doctor Francesco Iorio Ph.D
Research Group Leader at Iorio Group, Computational Biology Research Centre, Human Technopole, Milan

Francesco Iorio est chef de groupe de recherche au sein du centre de recherche en biologie computationnelle de Human Technopole (l’institut des sciences de la vie de Milan, Italie). Son groupe travaille à l’interface de la biologie, de l’apprentissage automatique, des statistiques et de la théorie de l’information pour comprendre et prédire comment les altérations génomiques et les caractéristiques moléculaires d’autres données omiques contribuent aux processus pathologiques, au recâblage des circuits biologiques et à l’impact des réponses thérapeutiques dans les cancers humains et d’autres maladies.
Leurs recherches visent à faire progresser la santé humaine en concevant des algorithmes, des outils informatiques et de nouvelles méthodes analytiques pour intégrer et analyser des ensembles de données de pharmacogénomique et de génomique fonctionnelle afin d’identifier de nouvelles cibles thérapeutiques, des biomarqueurs et des possibilités de repositionnement des médicaments.

Le groupe Iorio contribue à la création d’une carte complète de toutes les dépendances génétiques dans les cancers humains et au développement d’une infrastructure informatique pour traduire cette carte en lignes directrices pour le développement de médicaments à un stade précoce et la médecine de précision.
Ils conçoivent, mettent en œuvre et maintiennent des méthodes bioinformatiques et des outils originaux pour l’évaluation des modèles précliniques de cancer, le prétraitement, l’analyse et la visualisation des données de criblage par édition du génome pour la correction in-silico des biais spécifiques aux nouvelles technologies dans ces données, et l’optimisation des bibliothèques d’ARN guides uniques pour les cribles CRISPR-Cas9 groupés et d’autres contextes expérimentaux.
Ils s’intéressent également à l’analyse des big data, au développement de modèles prédictifs biomédicaux basés sur des données non biomédicales, et aux stratégies de randomisation sous contrainte efficaces sur le plan informatique pour tester les propriétés combinatoires dans les ensembles de données génomiques et les réseaux à grande échelle.

Doctor Kathryn McGinnis, Ph.D
Associate Editor, Nature Communications

Kathryn a rejoint Nature Communications en tant que rédactrice adjointe en 2021. Elle a étudié le rôle des stéroïdes dans le cancer du cerveau en utilisant le séquençage de l’ARN en vrac et à l’échelle d’une seule cellule au cours de son doctorat et de son post-doc à l’Université de Leeds, au Royaume-Uni. Auparavant, elle a obtenu une licence en immunologie à l’université de Glasgow et une maîtrise en sciences en travaillant dans le secteur des banques de cellules souches. Kathryn s’occupe des manuscrits relatifs à l’utilisation des technologies -omiques dans le domaine du cancer, en particulier dans le domaine des biomarqueurs de la réponse au traitement.

 

Stephane Mission Bio (information will follow)
Organisateurs

L’équipe d’organisation :

Benoît Aliaga, Ph.D;
CRCT Toulouse

Chloé Bessiere, Ph.D;
CRCT Toulouse

Steffen Fuchs, MD;
CRCT Toulouse, Charité-University Hospital Berlin, Germany

Julie Ripoll, Ph.D;
LIRMM, Montpellier

Pierre-François Roux, Ph.D;
IRCM, Montpellier
Benjamin Bonnard, Ph.D;
BRIC, Bordeaux
Sara Ovejero, Ph.D;
IGH, Montpellier

Bénévoles
Abdel Mounin Essabbar, Ingénieur
CRCT Toulouse
Alexandre Gay, Ingénieur;
CRCT Toulouse
Laurence Granier, Ingénieure
CRCT Toulouse
Stéphane Cailmail, Ingénieur
CRCT Toulouse
   
Mary Poupot, chercheure
CRCT TOulouse
Christine Bezombes, chercheure
CRCT Toulouse
   
Informations pratiques

Localisation :

Le congrès aura lieu à l’IUCT (Institut Universitaire du Cancer de Toulouse, https://www.iuct-oncopole.fr/en), amphithéâtre. La session poster et le déjeuner auront lieu à proximité de l’amphithéâtre.

Le cocktail de fin aura lieu au CRCT, au premier étage, directement accessible à partir de l’IUCT.

Commentbaccéder à IUCToncopole

 

 

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Une nouvelle cible pour lutter contre certaines leucémies agressives https://www.crct-inserm.fr/une-nouvelle-cible-pour-lutter-contre-certaines-leucemies-agressives/ Tue, 04 Apr 2023 07:11:37 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=54926 L’article Une nouvelle cible pour lutter contre certaines leucémies agressives est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Une nouvelle cible pour lutter contre certaines leucémies agressives

Leucémie aiguës Myéloïdes,

FLT3,

C/AAT-enhancer binding protein α,

Jean-Emmanuel Sarry équipe METAML– Métabolisme et résistance thérapeutique dans les leucémies aiguës myéloïdes .

Des scientifiques de l’UNIGE et du Centre de recherches en cancérologie de Toulouse ont découvert un mécanisme de mort cellulaire qui pourrait être exploité pour tuer les cellules tumorales responsables de leucémies aiguës myéloïdes (LAM). A lire dans la revue Cancer Discovery.

Les LAM sont des tumeurs malignes du sang qui affectent la production de cellules sanguines. Elles sont causées par une prolifération incontrôlée de cellules immunitaires appelées progéniteurs myéloïdes et peuvent causer des symptômes graves, voire mortels. Les mutations dans le gène FLT3 sont courantes chez les patients atteints de LAM et sont associées à un mauvais pronostic.
Les scientifiques ont identifié la protéine C/AAT-enhancer binding protein α (C/EBPα), un facteur de transcription clé dans la différenciation des cellules myéloïdes, comme une nouvelle cible thérapeutique potentielle. Dans une étude publiée dans la revue Cancer Discovery, les chercheurs ont montré que l’activation coordonnée de C/EBPα et FLT3 augmente la production d’acides gras mono-insaturés dans les cellules de LAM mutées FLT3 via l’enzyme Stearoyl-CoA-Desaturase (SCD). L’inhibition du gène FLT3 provoque des changements métaboliques en réponse à la régulation négative de C/EBPα-SCD, qui induit l’oxydation des lipides de la membrane cellulaire et parvient ainsi à tuer les cellules leucémiques.
En ciblant la régulation de C/EBPα-SCD, cette découverte ouvre la voie à une nouvelle stratégie thérapeutique basée sur l’utilisation de molécules capables d’induire la mort cellulaire par ferroptose, une forme de mort cellulaire caractérisée par l’accumulation de lipides oxydés toxiques dans les cellules de la LAM mutées FLT3. Cette découverte est donc une avancée importante pour les patients atteints de LAM avec mutation FLT3, car elle pourrait conduire à de nouveaux traitements pour lutter contre cette forme agressive de cancer du sang.

Découvrir l’article publié

Cancer Discov. 2023 Apr 3;CD-22-0411.doi: 10.1158/2159-8290.CD-22-0411. Online ahead of print.
C/EBPa confers dependence to fatty acid anabolic pathways and vulnerability to lipid oxidative stress-induced ferroptosis in FLT3-mutant leukemia
Marie Sabatier, Rudy Birsen, Laura Lauture, Sarah Mouche, Paolo Angelino, Jonas Dehairs, Lea Goupille, Ismael Boussaid, Mael Heiblig, Emeline Boet, Ambrine Sahal, Estelle Saland, Juliana C Santos, Marc Armengol, Miranda Fernandez-Serrano, Thomas Farge, Guillaume Cognet, Federico Simonetta, Corentin Pignon, Antoine Graffeuil, Celine Mazzotti, Herve Avet-Loiseau, Oceane Delos, Justine Bertrand-Michel, Amelie Chedru, Vilma Dembitz, Paolo Gallipoli, Natasha S Anstee, Sun Loo, Andrew H Wei, Martin Carroll, Armelle Goubard, Remy Castellano, Yves Collette, Francois Vergez, Veronique Mansat-De Mas, Sarah Bertoli, Suzanne Tavitian, Muriel Picard, Christian Recher, Nathalie Bourges-Abella, Fanny Granat, Olivier Kosmider, Pierre Sujobert, Benoit Colsch, Carine Joffre, Lucille Stuani, Johannes V Swinnen, Herve Guillou, Gael Roue, Nawad Hakim, Anne S Dejean, Petros Tsantoulis, Clement Larrue, Didier Bouscary, Jerome Tamburini, Jean-Emmanuel Sarry

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Top 5 des publications du CRCT année 2022 https://www.crct-inserm.fr/top-5-des-publications-du-crct-annee-2022/ Mon, 20 Feb 2023 16:22:52 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=54186 L’article Top 5 des publications du CRCT année 2022 est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Le CRCT présente son Top 5 des publications issues de ses équipes au cours de l’année 2022. Retrouvez toutes les publications 2022 de chaque équipe sur leur page dédiée.

Ultrarapid Lytic Granule Release from CTLs Activates Ca2+-Dependent Synaptic Resistance Pathways in Melanoma Cells

Filali, Liza, Marie-Pierre Puissegur, Kevin Cortacero, Sylvain Cussat-Blanc, Roxana Khazen, Nathalie, Van Acker, François-Xavier Frenois, et al. « Ultrarapid Lytic Granule Release from CTLs Activates Ca2+-Dependent Synaptic Resistance Pathways in Melanoma Cells ». Science Advances 2022 Feb 18;8(7):eabk3234. doi: 10.1126/sciadv.abk3234. Epub 2022 Feb 16.

Résumé

Les lymphocytes T cytotoxiques (CTL) humains présentent une sécrétion ultrarapide de granules lytiques, mais on ignore si les cellules de mélanome mobilisent des mécanismes de défense avec une rapidité proportionnelle. Nous avons utilisé la microscopie unicellulaire time-lapse pour offrir des analyses à haute résolution spatio-temporelle des événements subcellulaires dans les cellules de mélanome lors d’une attaque CTL. La perforation de la cellule cible a initié, à la synapse, une vague de Ca2+ qui s’est propagée vers l’intérieur de la cellule en quelques millisecondes et a déclenché une mobilisation lysosomale vers la synapse, facilitant la réparation de la membrane et conférant une résistance à la cytotoxicité induite par les CTL. L’inhibition du flux de Ca2+ et l’inhibition de l’expression de la synaptotagmine VII ont limité l’exposition des lysosomes synaptiques et augmenté la cytotoxicité. L’immunohistochimie multiplexée des nodules de mélanome de patients, combinée à une analyse d’image automatisée, a montré que les cellules de mélanome confrontées aux CTL CD8+ dans la périphérie de la tumeur ou la zone péritumorale présentaient un enrichissement lysosomal significatif. Nos résultats ont identifié l’entrée synaptique de Ca2+ comme le déclencheur du déploiement des lysosomes dans la synapse lors d’une attaque CTL et ont mis en évidence une topologie défensive surprenante de la distribution des lysosomes dans les nodules de mélanome.

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Contact : équipe DynAct, Dynamique moléculaire des interactions lymphocytaires, dirigée par Salvatore Valitutti

Targeting the Liver X Receptor with Dendrogenin A Differentiates Tumour Cells to Secrete Immunogenic Exosome-Enriched Vesicles

Record, Michel, Mehdi Attia, Kevin Carayon, Laly Pucheu, Julio Bunay, Régis Soulès, Silia Ayadi, et al. « Targeting the Liver X Receptor with Dendrogenin A Differentiates Tumour Cells to Secrete Immunogenic Exosome-Enriched Vesicles ». Journal of Extracellular Vesicles 2022 Apr;11(4):e12211. doi: 10.1002/jev2.12211.

Résumé

Les cellules tumorales ont la particularité d’avoir perdu leur état de différenciation. Elles sécrètent de manière constitutive des petites vésicules extracellulaires (sEV), appelées exosomes lorsqu’elles sont issues des endosomes tardifs. La dendrogénine A (DDA) est un métabolite endogène suppresseur de tumeurs, dérivé du cholestérol. C’est une nouvelle classe de ligand des récepteurs nucléaires Liver X (LXR) qui régulent l’homéostasie du cholestérol et l’immunité. Nous avons émis l’hypothèse que la DDA, qui induit la différenciation des cellules tumorales, l’inhibition de la croissance tumorale et l’infiltration des cellules immunitaires dans les tumeurs, pourrait modifier fonctionnellement les sEV sécrétées par les cellules tumorales. Ici nous montrons que la DDA différencie les cellules tumorales en agissant via le LXRβ. Ceci entraîne une production accrue de sEV (appelées DDA-sEV) enrichis en exosomes. Les DDA-sEV sécrétées par les cellules traitées avec la DDA ont été caractérisées pour leur contenu et leur activité en comparaison avec les sEV sécrétés par les cellules contrôles (C-sEV). Les DDA-sEV ont un contenu enrichi, par rapport aux C-sEV, en antigènes de différenciation, signaux “eat-me”, LC3 lipidé et bis(monoacylglycero)phosphate, un phospholipide endosomal. Les DDA-sEV stimulent la maturation des cellules dendritiques et la polarisation des lymphocytes T Th1. De plus, les DDA-sEV inhibent la croissance des tumeurs implantées dans des souris immunocompétentes, par rapport aux conditions contrôles. Cette étude révèle un contrôle pharmacologique, par le biais d’un récepteur nucléaire, de la sécrétion, de la composition et de la fonction immunitaire des sEV tumoraux enrichis en exosomes. Cibler le LXR pourrait être une nouvelle stratégie pour reprogrammer les cellules tumorales et les sEV à stimuler l’immunité anti-tumorale.

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Contact : éEquipe INOV, Métabolisme du cholestérol et innovations thérapeutiques, dirigée par Marc Poirot et Sandrine Silvente Poirot

SAR442085, a Novel Anti-CD38 Antibody with Enhanced Antitumor Activity against Multiple Myeloma

Kassem, Sahar, Béré K. Diallo, Nizar El-Murr, Nadège Carrié, Alexandre Tang, Alain Fournier, Hélène Bonnevaux, et al. « SAR442085, a Novel Anti-CD38 Antibody with Enhanced Antitumor Activity against Multiple Myeloma ». Blood 139, 2022 Feb 24;139(8):1160-1176. doi: 10.1182/blood.2021012448.

Résumé

Les anticorps monoclonaux (AcM) anti-CD38 représentent une percée dans le traitement du myélome multiple (MM), mais certains patients ne répondent pas ou progressent rapidement avec cette thérapie, ce qui souligne le besoin de nouvelles approches. Dans cette étude, nous avons comparé l’efficacité préclinique du SAR442085, un AcM anti-CD38 de nouvelle génération présentant une affinité accrue pour l’activation des récepteurs Fcγ (FcγR), avec les AcM anti-CD38 de première génération daratumumab et isatuximab. Dans les essais de résonance plasmonique de surface et de liaison cellulaire, nous avons constaté que le SAR442085 avait une affinité de liaison plus élevée que le daratumumab et l’isatuximab pour le FcγRIIa (CD32a) et le FcγRIIIa (CD16a). Le SAR442085 a également présenté une meilleure cytotoxicité cellulaire dépendant des anticorps (ADCC) in vitro contre un panel de cellules de MM exprimant des densités variables de récepteurs CD38, y compris les plasmocytes primaires des patients atteints de MM. L’amélioration de l’ADCC du SAR442085 a été confirmée en utilisant des cellules NK-92 portant des variants FcγRIIIa (CD16a)-158F/V à faible et forte affinité. En utilisant des cellules primaires de moelle osseuse de patients atteints de MM, nous avons confirmé que le SAR442085 avait une capacité accrue à engager le FcγRIIIa, entraînant une activation et une dégranulation plus élevées des cellules tueuses naturelles (NK) contre les plasmocytes primaires que les AcM anti-CD38 de type Fc sauvage préexistants. Enfin, en utilisant des souris transgéniques huFcgR qui expriment des récepteurs Fcγ humains sous le contrôle de leurs éléments régulateurs humains, nous avons démontré que le SAR442085 avait une plus grande efficacité antitumorale in vivo dépendante des cellules NK et une meilleure survie que le daratumumab et l’isatuximab contre les cellules de thymome EL4 ou de myélome VK*MYC surexprimant le CD38 humain. Ces résultats soulignent l’efficacité préclinique du SAR442085 et soutiennent l’évaluation actuelle de cet anticorps anti-CD38 de nouvelle génération en phase I de développement clinique chez les patients atteints de MM en rechute/réfractaire.

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Contact : Equipe GENIM, Oncogénomique Et Immunologie Du Myélome, dirigée par Ludovic Martinet et Hervé Avet-Loiseau

4. In Multiple Myeloma, High-Risk Secondary Genetic Events Observed at Relapse Are Present From Diagnosis in Tiny, Undetectable Subclonal Populations

Lannes R, Samur M, Perrot A, Mazzotti C, Divoux M, Cazaubiel T, Leleu X, Schavgoulidze A, Chretien ML, Manier S, Adiko D, Orsini-Piocelle F, Lifermann F, Brechignac S, Gastaud L, Bouscary D, Macro M, Cleynen A, Mohty M, Munshi N, Corre J, Avet-Loiseau H. In Multiple Myeloma, High-Risk Secondary Genetic Events Observed at Relapse Are Present From Diagnosis in Tiny, Undetectable Subclonal Populations. J Clin Oncol.2022 Nov 7;JCO2101987. doi: 10.1200/JCO.21.01987

Résumé

Objectif : Le myélome multiple (MM) est caractérisé par des anomalies du nombre de copies (ANC), dont certaines influencent le devenir des patients et ne sont parfois observées qu’au moment de la ou des rechutes, ce qui suggère leur acquisition au cours de l’évolution tumorale. Cependant, la présence de micro-sous-clones peut passer inaperçue dans les analyses de masse. Ici, nous utilisons la génomique unicellulaire pour déterminer la fréquence à laquelle ces événements à haut risque sont manqués lors du diagnostic et sélectionnés lors de la rechute.

Matériels et méthodes : Nous avons analysé 81 patients atteints de dyscrasie plasmocytaire en utilisant le séquençage CNA unicellulaire. Soixante-six patients ont été sélectionnés au moment du diagnostic, neuf lors de la première rechute et six à des stades présymptomatiques. Un total de 956 patients nouvellement diagnostiqués avec un MM et des patients avec une première rechute de MM ont été identifiés rétrospectivement avec les données cytogénétiques requises pour évaluer l’enrichissement des événements à risque de l’ANC et l’impact sur la survie.

Résultats : Un total de 52 176 cellules MM ont été analysées. Soixante-quatorze patients (91 %) présentaient 2 à 16 sous-clones. Parmi ces patients, 28,7 % avaient un sous-clone présentant des caractéristiques à haut risque (del(17p), del(1p32) et gain 1q) au moment du diagnostic. Chez un patient présentant un gain 1q sous-clonal au moment du diagnostic, nous avons analysé les échantillons du diagnostic, de la post-induction et de la première rechute, qui ont montré une augmentation du sous-clone à haut risque de gain 1q (16 %, 70 % et 92 %, respectivement). Dans notre base de données cliniques, nous avons constaté que la fréquence du gain 1q augmentait de 30,2 % au moment du diagnostic à 43,6 % au moment de la rechute (odds ratio, 1,78 ; IC 95 %, 1,58 à 2,00). Nous avons ensuite effectué des analyses de survie, qui ont montré que les courbes de survie sans progression et globale étaient superposables entre les patients qui avaient le gain 1q dès le diagnostic et ceux qui l’avaient apparemment acquis lors de la rechute. Cela suggère fortement que de nombreux patients avaient des gains 1q au moment du diagnostic dans des microclones qui n’ont pas été détectés par les analyses globales.

Conclusion : Ces données suggèrent que l’identification de ces rares cellules agressives peut nécessiter un traitement plus agressif dès le diagnostic pour les empêcher de devenir le clone dominant.

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Contact : Equipe GENIM, Oncogénomique Et Immunologie Du Myélome, dirigée par Ludovic Martinet et Hervé Avet-Loiseau

Combination of Trastuzumab, Pertuzumab, and Docetaxel in Patients With Advanced Non-Small-Cell Lung Cancer Harboring HER2 Mutations: Results From the IFCT-1703 R2D2 Trial

Julien Mazieres, Claire Lafitte, Charles Ricordel, Laurent Greillier, Elodie Negre, Gérard Zalcman, Charlotte Domblides, Jeannick Madelaine, Jaafar Bennouna, Céline Mascaux, Denis Moro-Sibilot, François Pinquie, Alexis B Cortot, Josiane Otto, Jacques Cadranel, Alexandra Langlais, Franck Morin, Virginie Westeel, Benjamin Besse
Combination of Trastuzumab, Pertuzumab, and Docetaxel in Patients With Advanced Non-Small-Cell Lung Cancer Harboring HER2 Mutations: Results From the IFCT-1703 R2D2 Trial
J Clin Oncol. 2022 Mar 1;40(7):719-728.doi: 10.1200/JCO.21.01455. Epub 2022 Jan 24.

Publication clinique en lien avec l’IUCTo

Résumé

Objectif : Les insertions et les mutations ponctuelles de l’exon 20 de HER2 sont des facteurs oncogèniques présents chez 1 à 2 % des patients atteints de cancer du poumon non à petites cellules (CPNPC). Aucune thérapie ciblée n’est approuvée pour ce sous-groupe de patients. Nous avons évalué de manière prospective l’efficacité de l’association de deux anticorps dirigés contre le facteur de croissance épidermique humain 2 (HER2) trastuzumab et pertuzumab avec le docétaxel.

Méthodes : L’essai IFCT 1703-R2D2 est un essai de phase II multicentrique et non randomisé. Les patients atteints d’un CBNPC avancé HER2-muté et ayant progressé après ≥ 1 traitement à base de platine ont été recrutés. Les patients ont reçu du pertuzumab à une dose de charge de 840 mg et 420 mg par la suite ; du trastuzumab à une dose de charge de 8 mg/kg et 6 mg/kg par la suite ; et du docétaxel à une dose de 75 mg/m2 toutes les 3 semaines. Le principal critère d’évaluation était le taux de réponse objective (ORR). Les autres critères d’évaluation comprenaient la durée de la réponse, la survie sans progression et la sécurité (NCT03845270).

Résultats : Quarante-cinq patients ont été recrutés et traités. L’âge médian était de 64,5 ans (fourchette : 31-84 ans), 35 % étaient fumeurs, 72 % étaient des femmes, 15 % avaient un statut de performance de 2 et 30 % avaient des métastases cérébrales. Le taux de réponse objective était de 29 % (n = 13), et 58 % avaient une maladie stable (n = 26). La survie médiane sans progression était de 6,8 mois (IC 95 %, 4,0 à 8,5). La durée médiane de la réponse chez les patients ayant une réponse confirmée (n = 13) était de 11 mois (IC 95 %, 2,9 à 14,9). Des effets indésirables de grade 3/4 liés au traitement ont été observés chez 64% des patients. Aucun patient n’a interrompu le traitement en raison de la toxicité. Les effets indésirables de grade ≥ 3 liés au traitement les plus fréquents étaient la neutropénie (33%), la diarrhée (13%) et l’anémie (9%).

Conclusion : La trithérapie avec le trastuzumab, le pertuzumab et le docétaxel est réalisable et efficace pour le CBNPC avancé prétraité HER2-muté. Ces résultats soulignent l’efficacité de la stratégie basée sur les anticorps anti-HER2, qui devrait être envisagée pour ces patients.

 

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Contact : Equipe SIGNATHER, Signalisation cellulaire, oncogenèse et thérapeutiques? dirigée par Gilles Favre et Olivier Sordet

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Myélome multiple : hétérogénéité pronostique dans la classe intermédiaire de risque du score R-ISS. https://www.crct-inserm.fr/myelome-multiple-heterogeneite-pronostique-dans-la-classe-intermediaire-de-risque-du-score-r-iss/ Wed, 05 Oct 2022 12:44:15 +0000 https://www.crct-inserm.fr/?p=51489 L’article Myélome multiple : hétérogénéité pronostique dans la classe intermédiaire de risque du score R-ISS. est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Myélome multiple : hétérogénéité pronostique dans la classe intermédiaire de risque du score R-ISS.

Myélome multiple,

Cytogénétique,

Pronostic

Anaïs SchavgoulidzeEquipe GENIM – Oncogénomique Et Immunologie Du Myélome

Le myélome multiple (MM) est caractérisé par l’accumulation clonale de plasmocytes dans la moelle osseuse. Malgré des progrès considérables dans la prise en charge des patients, le pronostic des patients reste très hétérogène. L’IMWG (International Myeloma Working Group) recommande d’utiliser le score pronostique R-ISS (Revised International Staging System) pour stratifier les patients et ainsi identifier les patients de haut risque. Dans cette étude, nous avons montré dans le stade II du score R-ISS (risque intermédiaire) une grande hétérogénéité en terme de pronostic. La stratification de ces patients peut être améliorée en les divisant selon leurs anomalies cytogénétiques (AC) et leur marqueurs biochimiques (score ISS : albumine et β2-microglobuline). A l’ère des traitements personnalisés dans le MM, les patients de haut risque doivent être identifiés avec précision. Nous pensons qu’un score trop simplifié ne peut être satisfaisant et que nous devrions prendre en compte le poids additionnel des AC, de la génomique et d’autres marqueurs de suivi comme la maladie résiduelle ou l’imagerie.

Ce travail remet en question la précision du score pronostique international R-ISS et soulève l’intérêt de nouveaux scores plus performants comme le LP score, développé par notre équipe, et basé uniquement sur des anomalies cytogénétiques.

Découvrir l’article publié

Haematologica. 2022 Sep 29.doi: 10.3324/haematol.2021.280566.
Heterogeneity in long term outcomes for R-ISS stage II in newly diagnosed multiple myeloma patients
Anais Schavgoulidze, Valerie Lauwers-Cances, Aurore Perrot, Titouan Cazaubiel, Marie-Lorraine Chretien, Philippe Moreau, Thierry Facon, Xavier Leleu, Lionel Karlin, Anne-Marie Stoppa, Olivier Decaux, Karim Belhadj, Bertrand Arnulf, Mohamad Mohty, Clara M Ariette, Cecile Fohrer-Sonntag, Pascal Lenain, Jean-Pierre Marolleau, Mourad Tiab  18 , Carla Araujo  19 , Frederique Orsini-Piocelle  20 , Arnaud Jaccard  21 , Murielle Roussel, Lotfi Benboubker, Jean-Richard Eveillard, Mamoun Dib, Marion Divoux, Michel Attal, Herve Avet-Loiseau, Jill Corre

Collaborations et remerciements

Nous remercions l’Intergroupe Francophone du Myélome (IFM) pour avoir fourni les échantillons des patients et leurs données cliniques, avec un remerciement spécial pour Sandrine Rollet.

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Leucémies myéloïdes : comprendre les résistances aux traitements pour aller vers la médecine personnalisée https://www.crct-inserm.fr/leucemies-myeloides-comprendre-les-resistances-aux-traitements-pour-aller-vers-la-medecine-personnalisee/ Mon, 15 Nov 2021 12:47:15 +0000 https://www.crct-inserm.fr/v2/?p=40478 L’article Leucémies myéloïdes : comprendre les résistances aux traitements pour aller vers la médecine personnalisée est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Leucémies myéloïdes : comprendre les résistances aux traitements pour aller vers la médecine personnalisée

Adaptation mitochondriale

résistance aux thérapies ciblées récemment approuvées

Leucémie Myéloïde Aigüe

La prise en charge et le traitement des leucémies aiguës myéloïdes (LAM) se sont beaucoup améliorés ces dernières années, mais la survie globale demeure encore faible. En effet, la résistance aux différents traitements représente toujours un défi clinique majeur. A partir de modèles animaux mais également en travaillant avec des patients, des scientifiques de l’Inserm, du CNRS et de l’Université Toulouse III – Paul Sabatier au Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse ont identifié un nouveau biomarqueur prédictif de la réponse à une bithérapie (combinaison d’une chimiothérapie et d’une thérapie ciblée) utilisée dans le traitement des LAM, ainsi que des mécanismes de résistance permettant d’expliquer les rechutes.

Les leucémies regroupent plusieurs types de cancer du sang et touchent près de 10 000 personnes chaque année en France. Parmi-elles, les leucémies aiguës myéloïdes (LAM), qui affectent les cellules hématopoïétiques[1] de la moelle osseuse.

La chimiothérapie intensive a longtemps été le traitement de choix pour les patients atteints. Si la plupart d’entre eux y répond favorablement et entre en rémission, la survie globale à plus long terme reste faible. En effet, certaines cellules cancéreuses résistantes persistent dans l’organisme suite à la chimiothérapie, entrainant des rechutes. 

Depuis quelques années, le développement de thérapies ciblées a permis d’améliorer la prise en charge et la réponse des patients, allongeant un peu la survie, notamment chez les personnes âgées non éligibles à la chimiothérapie. Toutefois, même avec ces thérapies, les rechutes constituent toujours une problématique importante. Comprendre les mécanismes qui sous-tendent les résistances aux traitements des leucémies et trouver un moyen de les lever sont au cœur des travaux du chercheur Inserm Jean-Emmanuel Sarry et de son équipe au Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse (Inserm/CNRS/Université de Toulouse III -Paul Sabatier).

Alors que la plupart des scientifiques qui travaillent sur le sujet s’intéressent plutôt aux mécanismes génétiques associées aux résistances, l’équipe étudie les mécanismes non génétiques pour comprendre pourquoi certains patients sont plus susceptibles de faire des rechutes.

 

Identification d’une « signature Mitoscore »

Dans leur nouvelle étude, les chercheurs se sont intéressés à une bithérapie (chimiothérapie conventionnelle combiné à une nouvelle thérapie ciblée) récemment approuvée et de plus en plus utilisée dans le traitement des LAM.

A partir des transcriptomes de patients (c’est-à-dire l’ensemble des ARN messagers issus de l’expression du génome), ils montrent que les personnes qui répondent le mieux à la bithérapie et qui ont un allongement de leur survie présentent un biomarqueur particulier – une « signature Mitoscore » – associée à une forte activité mitochondriale[2]. « Autrement dit, cette signature Mitoscore élevée, qui traduit une activité mitochondriale importante, serait prédictive d’une meilleure réponse à ces traitements », précise Jean-Emmanuel Sarry.

Enfin, grâce au séquençage à l’échelle de la cellule unique[3] de la maladie résiduelle[4] après cette bithérapie, les chercheurs ont constaté un remodelage particulier de la fonction mitochondriale permettant aux cellules cancéreuses de s’adapter aux thérapies et induire la rechute du patient. Chez la souris, l’équipe montre aussi qu’un traitement fondé sur une molécule qui inhibe l’action des mitochondries permet de bloquer ce remodelage de la fonction mitochondriale, de prévenir les rechutes et d’allonger la survie des animaux.

« L’objectif est maintenant de tester cette signature Mitoscore sur de très grosses cohortes afin de valider l’utilité de ce biomarqueur. A terme, l’idée serait de pouvoir l’utiliser pour améliorer le suivi des patients et pour proposer les thérapies de manière plus personnalisée, en donnant la bithérapie, en association ou non avec l’inhibiteur des mitochondries, aux personnes susceptibles d’en tirer un bénéfice.  Ces travaux pourraient donc avoir un réel impact clinique dans les prochaines années », explique Jean-Emmanuel Sarry.

Découvrir l’article publié

Nat Cancer (2021). https://doi.org/10.1038/s43018-021-00264-y
Mitochondrial inhibitors circumvent adaptive resistance to venetoclax and cytarabine combination therapy in acute myeloid leukemia.
Claudie Bosc, Estelle Saland, Aurélie Bousard, Noémie Gadaud, Marie Sabatier, Guillaume Cognet, Thomas Farge, Emeline Boet, Mathilde Gotanègre, Nesrine Aroua, Pierre-Luc Mouchel, Nathaniel Polley, Clément Larrue, Eléonore Kaphan, Muriel Picard, Ambrine Sahal, Latifa Jarrou, Marie Tosolini, Florian Rambow, Florence Cabon, Nathalie Nicot, Laura Poillet-Perez, Yujue Wang, Xiaoyang Su, Quentin Fovez, Jérôme Kluza, Rafael José Argüello, Céline Mazzotti, Hervé Avet-Loiseau, François Vergez, Jérôme Tamburini, Jean-Jacques Fournié, Ing S. Tiong, Andrew H. Wei, Tony Kaoma, Jean-Christophe Marine, Christian Récher, Lucille Stuani, Carine Joffre & Jean-Emmanuel Sarry

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Altérations moléculaires et hétérogénéité au sein des cellules myélomateuses. https://www.crct-inserm.fr/alterations-moleculaires-et-heterogeneite-au-sein-des-cellules-myelomateuses/ Mon, 25 Oct 2021 09:11:20 +0000 https://www.crct-inserm.fr/v2/?p=37580 Hervé Avet-Loiseau & Jill Corre

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HERVE AVET-LOISEAU & JILL CORRE

Altérations Moléculaires Et Hétérogénéité Au Sein Des Cellules Myélomateuses.

 

 

Notre objectif, principalement translationnel, est d’améliorer la prise en charge thérapeutique des patients atteints de myélome multiple (MM), un cancer de la moelle osseuse, et de prolonger leur survie. Pour ce faire, nous avons créé un réseau national qui nous a permis de constituer la plus grande bio-banque de tumeurs au monde, regroupant les caractéristiques cliniques et évolutives de milliers de patients.

Traitement personnalisé en fonction des modifications chromosomiques.

Ces dernières années, de nombreux nouveaux médicaments ont été enregistrés, rendant le choix thérapeutique complexe pour les médecins. Notre objectif est de les guider dans le choix de la bonne combinaison de médicaments pour les bons patients. Plus précisément, nous voulons améliorer l’identification des patients à haut risque en cette ère de nouveaux médicaments, car les stratégies les plus efficaces profiteront surtout aux patients à haut risque nouvellement diagnostiqués. Récemment, nous avons décrit un score basé sur 6 marqueurs pour stratifier de manière précise et routinière les patients atteints de MM (Perrot et al, JCO 2019). Nous séquençons massivement ces tumeurs afin d’identifier les sous-groupes de patients les plus susceptibles de répondre à des traitements spécifiques, afin d’aider les cliniciens dans leurs choix. Nous avons récemment montré que 60% des patients en rechute précoce ne présentent aucune altération génomique pronostique connue. Notre projet vise à identifier, par séquençage à haut débit, les nouvelles anomalies génomiques qui prédisent le résultat clinique des patients atteints de myélome.

Évolutions sous-clonales dans le myélome

L’identification des sous-clones du MM a considérablement changé notre vision des mécanismes qui sous-tendent la résistance du MM. Cependant, l’hétérogénéité clonale du MM reste mal définie, principalement en raison de limitations techniques. Nous avons récemment acquis une plateforme Chromium de 10xGenomics, permettant l’analyse transcriptomique, CNV, et ATACSeq au niveau de la cellule unique (sc). En utilisant cette approche “multi-omique”, nos objectifs sont de décrire le paysage sous-clonal de chaque patient au moment du diagnostic et de leur première rechute, et d’analyser les cellules tumorales résiduelles au moment de la réponse au traitement afin de déterminer quels sous-clones ont été sélectionnés. En intégrant des données omiques unicellulaires variables (ARN, CNV, ATAC, mutations), nous serons en mesure de comprendre les déterminants moléculaires de cette sélection. Les données obtenues pourraient avoir un impact majeur sur notre compréhension de la sélection sous-clonale avec un traitement donné (sélection induite par le traitement ou histoire naturelle), et si les sous-clones sélectionnés précocement seront les principaux au moment de la rechute.

 

Figure 1 : Le séquençage d’ARN à cellule unique identifie différents sous-clones de MM au moment du diagnostic et de la rechute. Graphique t-SNE représentatif des cellules CD138+ de myelome au moment du diagnostic. Séquençage ciblé des cellules tumorales d’un patient au diagnostic (cercle extérieur) et à la rechute (cercle intérieur).

Figure 2 : Survie globale des patients en fonction du délai de la première rechute (tardive en rouge, précoce en bleu) et des facteurs de risques cytogénétiques connus (faible risque trait continu, haut risque trait discontinu).

 

 

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GENIM https://www.crct-inserm.fr/genim/ Mon, 25 Oct 2021 08:02:08 +0000 https://www.crct-inserm.fr/v2/?page_id=37536 L’article GENIM est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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Équipe
Ludovic MARTINET & Hervé avet-LOISEAU

GENIM :

Oncogénomique Et Immunologie Du Myélome

Le laboratoire d’Excellence Toulouse Cancer est un projet qui vise à comprendre les mécanismes de résistance et de rechute dans les cancers.

Les spécificités

de notre axe de recherche

Myélome multiple

Modifications génomiques

Sélection clonale

Résistance

Immunité

Lymphocyte cytotoxique

Echappement immunitaire

Immunothérapie

DES PROJETS
DE RECHERCHE

LES FOCUS
DE L’ÉQUIPE

PRODUCTIONS SCIENTIFIQUES

PUBLICATIONS 2024
Schavgoulidze, Anaïs, Jill Corre, Mehmet K. Samur, Celine Mazzotti, Luka Pavageau, Aurore Perrot, Titouan Cazaubiel, et al. “RAS/RAFlandscape in Monoclonal Plasma Cell Conditions.” Blood, April 21, 2024, blood.2023022295. https://doi.org/10.1182/blood.2023022295.
Frenzel, Laurent, Olivier Decaux, Margaret Macro, Karim Belhadj-Merzoug, Salomon Manier, Cyrille Touzeau, Xavier Leleu, et al. “Venous Thromboembolism Prophylaxis and Multiple Myeloma Patients in Real-Life: Results of a Large Survey and Clinical Guidance Recommendations from the IFM Group.” Thrombosis Research 233 (January 2024): 153–64. https://doi.org/10.1016/j.thromres.2023.11.021.
PUBLICATIONS 2023
Aubry, Arthur, Joel D. Pearson, Jason Charish, Tao Yu, Jeremy M. Sivak, Dimitris P. Xirodimas, Hervé Avet-Loiseau, Jill Corre, Philippe P. Monnier, and Rod Bremner. “Deneddylation of Ribosomal Proteins Promotes Synergy between MLN4924 and Chemotherapy to Elicit Complete Therapeutic Responses.” Cell Reports 42, no. 8 (August 29, 2023): 112925. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2023.112925.
Pichler, Andrea C., Nadège Carrié, Marine Cuisinier, Samira Ghazali, Alison Voisin, Pierre-Paul Axisa, Marie Tosolini, et al. “TCR-Independent CD137 (4-1BB) Signaling Promotes CD8+-Exhausted T Cell Proliferation and Terminal Differentiation.” Immunity, June 27, 2023, S1074-7613(23)00264-9. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2023.06.007.
Schavgoulidze, Anais, Valerie Lauwers-Cances, Aurore Perrot, Titouan Cazaubiel, Marie-Lorraine Chretien, Philippe Moreau, Thierry Facon, et al. “Heterogeneity in Long-Term Outcomes for Patients with Revised International Staging System Stage II, Newly Diagnosed Multiple Myeloma.” Haematologica 108, no. 5 (May 1, 2023): 1374–84. https://doi.org/10.3324/haematol.2021.280566.
Lannes, Romain, Mehmet Samur, Aurore Perrot, Celine Mazzotti, Marion Divoux, Titouan Cazaubiel, Xavier Leleu, et al. “In Multiple Myeloma, High-Risk Secondary Genetic Events Observed at Relapse Are Present From Diagnosis in Tiny, Undetectable Subclonal Populations.” Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology 41, no. 9 (March 20, 2023): 1695–1702. https://doi.org/10.1200/JCO.21.01987.
PUBLICATIONS 2022
Termini, Rosalinda, David Žihala, Evangelos Terpos, Albert Perez-Montaña, Tomáš Jelínek, Marc Raab, Niels Weinhold, et al. “Circulating Tumor and Immune Cells for Minimally Invasive Risk Stratification of Smoldering Multiple Myeloma.” Clinical Cancer Research: An Official Journal of the American Association for Cancer Research 28, no. 21 (November 1, 2022): 4771–81. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-22-1594.
Martin, Tom, Paul G. Richardson, Thierry Facon, Philippe Moreau, Aurore Perrot, Ivan Spicka, Kamlesh Bisht, et al. “Primary Outcomes by 1q21+ Status for Isatuximab-Treated Patients with Relapsed/Refractory Multiple Myeloma: Subgroup Analyses from ICARIA-MM and IKEMA.” Haematologica 107, no. 10 (October 1, 2022): 2485–91. https://doi.org/10.3324/haematol.2022.280660.
Dahmani, Cylia, Eulalie Corre, Sarah Dandou, Alain Mangé, Ovidiu Radulescu, Peter J. Coopman, Pierre Cuq, and Romain M. Larive. “[Resistance to BRAF inhibitors: A lesson from clinical observations].” Medecine Sciences: M/S 38, no. 6–7 (July 2022): 570–78. https://doi.org/10.1051/medsci/2022083.
Kassem, Sahar, Béré K. Diallo, Nizar El-Murr, Nadège Carrié, Alexandre Tang, Alain Fournier, Hélène Bonnevaux, et al. “SAR442085, a Novel Anti-CD38 Antibody with Enhanced Antitumor Activity against Multiple Myeloma.” Blood 139, no. 8 (February 24, 2022): 1160–76. https://doi.org/10.1182/blood.2021012448.
Cazaubiel, Titouan, Xavier Leleu, Aurore Perrot, Salomon Manier, Laure Buisson, Sabrina Mahéo, Laura Do Souto Ferreira, et al. “Primary Plasma Cell Leukemia Displaying t(11;14) Have Specific Genomic, Transcriptional and Clinical Feature.” Blood, February 16, 2022, blood.2021014968. https://doi.org/10.1182/blood.2021014968.
Marchais, Antonin, Maria Eugenia Marques Da Costa, Bastien Job, Rachid Abbas, Damien Drubay, Sophie Piperno-Neumann, Olivia Fromigué, et al. “Immune Infiltrate and Tumor Microenvironment Transcriptional Programs Stratify Pediatric Osteosarcoma into Prognostic Groups at Diagnosis.” Cancer Research, January 25, 2022, canres.CAN-20-4189-A.2020. https://doi.org/10.1158/0008-5472.CAN-20-4189.
Dummer, Reinhard, Georgina V. Long, Caroline Robert, Hussein A. Tawbi, Keith T. Flaherty, Paolo A. Ascierto, Paul D. Nathan, et al. “Randomized Phase III Trial Evaluating Spartalizumab Plus Dabrafenib and Trametinib for BRAF V600-Mutant Unresectable or Metastatic Melanoma.” Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology, January 14, 2022, JCO2101601. https://doi.org/10.1200/JCO.21.01601.
Grand, Anaïs, Jean-Baptiste Desbouges, Coralie Guillemot, Coline Spinau, and Florent Puisset. “Still Some Constraints Before Generalization of Remote Clinical Trial Monitoring: A Pharmacist’s Point of View of the Lessons From the COVID-19 Pandemic.” JCO Oncology Practice, January 6, 2022, OP2100749. https://doi.org/10.1200/OP.21.00749.
Largeaud, Laetitia, Sarah Bertoli, Emilie Bérard, Suzanne Tavitian, Muriel Picard, Stéphanie Dufrechou, Naïs Prade, et al. “Genomic Landscape of Hyperleukocytic Acute Myeloid Leukemia.” Blood Cancer Journal 12, no. 1 (January 5, 2022): 4. https://doi.org/10.1038/s41408-021-00601-5.
Grenier, Adrien, Laury Poulain, Johanna Mondesir, Arnaud Jacquel, Claudie Bosc, Lucille Stuani, Sarah Mouche, et al. “AMPK-PERK Axis Represses Oxidative Metabolism and Enhances Apoptotic Priming of Mitochondria in Acute Myeloid Leukemia.” Cell Reports 38, no. 1 (January 4, 2022): 110197. https://doi.org/10.1016/j.celrep.2021.110197.
Rossi, Cédric, Marie Tosolini, Pauline Gravelle, Sarah Pericart, Salim Kanoun, Solene Evrard, Julia Gilhodes, et al. “Baseline SUVmax Is Related to Tumor Cell Proliferation and Patient Outcome in Follicular Lymphoma.” Haematologica 107, no. 1 (January 1, 2022): 221–30. https://doi.org/10.3324/haematol.2020.263194.
Daix, Manon, Martina Aida Angeles, Hélène Leray, Kelig Vergriete, Alejandra Martinez, and Gwenael Ferron. “Anterior Pelvic Exenteration and Laterally Extended Pelvic Resection: A Step by Step Procedure.” International Journal of Gynecological Cancer: Official Journal of the International Gynecological Cancer Society 32, no. 1 (January 2022): 107–8. https://doi.org/10.1136/ijgc-2021-003047.
Tauziède-Espariat, Arnault, Philipp Sievers, Frédérique Larousserie, Joseph Benzakoun, Delphine Guillemot, Gaëlle Pierron, Mathilde Duchesne, et al. “An Integrative Histopathological and Epigenetic Characterization of Primary Intracranial Mesenchymal Tumors, FET:CREB-Fused Broadening the Spectrum of Tumor Entities in Comparison with Their Soft Tissue Counterparts.” Brain Pathology (Zurich, Switzerland) 32, no. 1 (January 2022): e13010. https://doi.org/10.1111/bpa.13010.
PUBLICATIONS 2021
Corre, Jill, Aurore Perrot, Cyrille Hulin, Denis Caillot, Anne-Marie Stoppa, Thierry Facon, Xavier Leleu, et al. “Improved Survival in Multiple Myeloma during the 2005-2009 and 2010-2014 Periods.” Leukemia 35, no. 12 (December 2021): 3600–3603. https://doi.org/10.1038/s41375-021-01250-0.
Perrot, Aurore. “How I Treat Frontline Transplant-Eligible Multiple Myeloma.” Blood, November 17, 2021, blood.2020008735. https://doi.org/10.1182/blood.2020008735.
Schjesvold, Fredrik, Sara Bringhen, Paul G Richardson, Aurore Perrot, Xavier Leleu, Philippe Moreau, Meletios A Dimopoulos, et al. “Isatuximab plus Pomalidomide and Dexamethasone in Frail Patients with Relapsed/Refractory Multiple Myeloma: ICARIA-MM Subgroup Analysis.” American Journal of Hematology 96, no. 11 (November 1, 2021): E423–27. https://doi.org/10.1002/ajh.26319.
Facon, Thierry, Shaji K. Kumar, Torben Plesner, Robert Z. Orlowski, Philippe Moreau, Nizar Bahlis, Supratik Basu, et al. “Daratumumab, Lenalidomide, and Dexamethasone versus Lenalidomide and Dexamethasone Alone in Newly Diagnosed Multiple Myeloma (MAIA): Overall Survival Results from a Randomised, Open-Label, Phase 3 Trial.” The Lancet. Oncology 22, no. 11 (November 2021): 1582–96. https://doi.org/10.1016/S1470-2045(21)00466-6.
Mohty, Mohamad, Hervé Avet-Loiseau, and Jean-Luc Harousseau. “Requirements for Operational Cure in Multiple Myeloma.” Blood 138, no. 16 (October 21, 2021): 1406–11. https://doi.org/10.1182/blood.2021012854.
Botta, Cirino, Catarina Da Silva Maia, Juan-José Garcés, Rosalinda Termini, Cristina Perez, Irene Manrique, Leire Burgos, et al. “FlowCT for the Analysis of Large Immunophenotypic Datasets and Biomarker Discovery in Cancer Immunology.” Blood Advances, September 29, 2021, bloodadvances.2021005198. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2021005198.
Caulier, Alexis, Murielle Roussel, Pierre Morel, Naelle Lombion, Benoit Branco, Jean Galtier, Cyrille Hulin, et al. “EPIDEMIOLOGICAL LANDSCAPE OF YOUNG MULTIPLE MYELOMA PATIENTS DIAGNOSED EARLIER THAN 40 YEARS: THE FRENCH EXPERIENCE.” Blood, September 3, 2021, blood.2021011285. https://doi.org/10.1182/blood.2021011285.
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Melaiu, Ombretta, Angelica Macauda, Juan Sainz, Diego Calvetti, Maria Sole Facioni, Giuseppe Maccari, Rob Ter Horst, et al. “Common Gene Variants within 3’-Untranslated Regions as Modulators of Multiple Myeloma Risk and Survival.” International Journal of Cancer 148, no. 8 (April 15, 2021): 1887–94. https://doi.org/10.1002/ijc.33377.
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Avet-Loiseau, Hervé, Jesus San-Miguel, Tineke Casneuf, Shinsuke Iida, Sagar Lonial, Saad Z. Usmani, Andrew Spencer, et al. “Evaluation of Sustained Minimal Residual Disease Negativity With Daratumumab-Combination Regimens in Relapsed and/or Refractory Multiple Myeloma: Analysis of POLLUX and CASTOR.” Journal of Clinical Oncology: Official Journal of the American Society of Clinical Oncology 39, no. 10 (April 1, 2021): 1139–49. https://doi.org/10.1200/JCO.20.01814.
Schavgoulidze, Anaïs, Titouan Cazaubiel, Aurore Perrot, Hervé Avet-Loiseau, and Jill Corre. “Multiple Myeloma: Heterogeneous in Every Way.” Cancers 13, no. 6 (March 13, 2021). https://doi.org/10.3390/cancers13061285.
Corre, Jill, Aurore Perrot, Denis Caillot, Karim Belhadj, Cyrille Hulin, Xavier Leleu, Mohamad Mohty, et al. “Del(17p) without TP53 Mutation Confers a Poor Prognosis in Intensively Treated Newly Diagnosed Patients with Multiple Myeloma.” Blood 137, no. 9 (March 4, 2021): 1192–95. https://doi.org/10.1182/blood.2020008346.
Casneuf, Tineke, Homer C. Adams, Niels W. C. J. van de Donk, Yann Abraham, Jaime Bald, Greet Vanhoof, Koen Van der Borght, et al. “Deep Immune Profiling of Patients Treated with Lenalidomide and Dexamethasone with or without Daratumumab.” Leukemia 35, no. 2 (February 2021): 573–84. https://doi.org/10.1038/s41375-020-0855-4.
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Klionsky, Daniel J., Amal Kamal Abdel-Aziz, Sara Abdelfatah, Mahmoud Abdellatif, Asghar Abdoli, Steffen Abel, Hagai Abeliovich, et al. “Guidelines for the Use and Interpretation of Assays for Monitoring Autophagy (4th Edition)1.” Autophagy 17, no. 1 (January 2021): 1–382. https://doi.org/10.1080/15548627.2020.1797280.
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PUBLICATIONS 2020
Chari, Ajai, Mehmet Kemal Samur, Joaquin Martinez-Lopez, Gordon Cook, Noa Biran, Kwee Yong, Vania Hungria, et al. “Clinical Features Associated with COVID-19 Outcome in Multiple Myeloma: First Results from the International Myeloma Society Data Set.” Blood 136, no. 26 (December 24, 2020): 3033–40. https://doi.org/10.1182/blood.2020008150.
Munshi, Nikhil C., Herve Avet-Loiseau, Kenneth C. Anderson, Paola Neri, Bruno Paiva, Mehmet Samur, Meletios Dimopoulos, et al. “A Large Meta-Analysis Establishes the Role of MRD Negativity in Long-Term Survival Outcomes in Patients with Multiple Myeloma.” Blood Advances 4, no. 23 (December 8, 2020): 5988–99. https://doi.org/10.1182/bloodadvances.2020002827.
Cazaubiel, Titouan, Olga Mulas, Lydia Montes, Anaïs Schavgoulidze, Hervé Avet-Loiseau, Jill Corre, and Aurore Perrot. “Risk and Response-Adapted Treatment in Multiple Myeloma.” Cancers 12, no. 12 (November 24, 2020). https://doi.org/10.3390/cancers12123497.
Kaufman, Jonathan L., Meletios A. Dimopoulos, Darrell White, Lotfi Benboubker, Gordon Cook, Merav Leiba, James Morton, et al. “Daratumumab, Lenalidomide, and Dexamethasone in Relapsed/Refractory Myeloma: A Cytogenetic Subgroup Analysis of POLLUX.” Blood Cancer Journal 10, no. 11 (November 3, 2020): 111. https://doi.org/10.1038/s41408-020-00375-2.
Weulersse, Marianne, Assia Asrir, Andrea C. Pichler, Lea Lemaitre, Matthias Braun, Nadege Carrie, Marie-Veronique Joubert, et al. “Eomes-Dependent Loss of the Co-Activating Receptor CD226 Restrains CD8(+) T Cell Anti-Tumor Functions and Limits the Efficacy of Cancer Immunotherapy.” Immunity 53, no. 4 (October 13, 2020): 824-839.e10. https://doi.org/10.1016/j.immuni.2020.09.006.
Samur, Mehmet Kemal, Anil Aktas Samur, Mariateresa Fulciniti, Raphael Szalat, Tessa Han, Masood Shammas, Paul Richardson, et al. “Genome-Wide Somatic Alterations in Multiple Myeloma Reveal a Superior Outcome Group.” Journal of Clinical Oncology : Official Journal of the American Society of Clinical Oncology 38, no. 27 (September 20, 2020): 3107–18. https://doi.org/10.1200/JCO.20.00461.
Zajec, Marina, Kristine A. Frerichs, Martijn M. van Duijn, Inger S. Nijhof, Claudia A. M. Stege, Hervé Avet-Loiseau, Theo M. Luider, Yolanda B. de Rijke, Joannes F. M. Jacobs, and Niels W. C. J. van de Donk. “Cerebrospinal Fluid Penetrance of Daratumumab in Leptomeningeal Multiple Myeloma.” HemaSphere 4, no. 4 (August 2020): e413. https://doi.org/10.1097/HS9.0000000000000413.
Nakamura, Kyohei, Mark J. Smyth, and Ludovic Martinet. “Cancer Immunoediting and Immune Dysregulation in Multiple Myeloma.” Blood, July 9, 2020. https://doi.org/10.1182/blood.2020006540.
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Corre, Jill, Lydia Montes, Elodie Martin, Aurore Perrot, Denis Caillot, Xavier Leleu, Karim Belhadj, et al. “Early Relapse after Autologous Transplant for Myeloma Is Associated with Poor Survival Regardless of Cytogenetic Risk.” Haematologica 105, no. 9 (June 5, 2020): e480-483. https://doi.org/10.3324/haematol.2019.236588.
Lemaitre, Léa, Laura Do Souto Ferreira, Marie-Véronique Joubert, Hervé Avet-Loiseau, Ludovic Martinet, Jill Corre, and Bettina Couderc. “Imprinting of Mesenchymal Stromal Cell Transcriptome Persists Even after Treatment in Patients with Multiple Myeloma.” International Journal of Molecular Sciences 21, no. 11 (May 28, 2020): 3854. https://doi.org/10.3390/ijms21113854.
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Terpos, Evangelos, Monika Engelhardt, Gordon Cook, Francesca Gay, Maria-Victoria Mateos, Ioannis Ntanasis-Stathopoulos, Niels W. C. J. van de Donk, et al. “Management of Patients with Multiple Myeloma in the Era of COVID-19 Pandemic: A Consensus Paper from the European Myeloma Network (EMN).” Leukemia 34, no. 8 (2020): 2000–2011. https://doi.org/10.1038/s41375-020-0876-z.
Adamia, Sophia, Ivane Abiatari, Samir B. Amin, Mariateresa Fulciniti, Stephane Minvielle, Cheng Li, Philippe Moreau, Herve Avet-Loiseau, Nikhil C. Munshi, and Kenneth C. Anderson. “The Effects of MicroRNA Deregulation on Pre-RNA Processing Network in Multiple Myeloma.” Leukemia 34, no. 1 (2020): 167–79. https://doi.org/10.1038/s41375-019-0498-5.
PUBLICATIONS 2019
Boyle, Eileen M., Xavier Leleu, Marie-Odile Petillon, Lionel Karlin, Chantal Doyen, Helene Demarquette, Bruno Royer, et al. “Daratumumab and Dexamethasone Is Safe and Effective for Triple Refractory Myeloma Patients: Final Results of the IFM 2014-04 (Etoile Du Nord) Trial.” British Journal of Haematology 187, no. 3 (November 2019): 319–27. https://doi.org/10.1111/bjh.16059.
Pertesi, Maroulio, Maxime Vallee, Xiaomu Wei, Maria V. Revuelta, Perrine Galia, Delphine Demangel, Javier Oliver, et al. “Exome Sequencing Identifies Germline Variants in DIS3 in Familial Multiple Myeloma.” Leukemia 33, no. 9 (September 2019): 2324–30. https://doi.org/10.1038/s41375-019-0452-6.
Henriot, Basile, Emmanuel Rouger, Chloe Rousseau, Martine Escoffre, Martine Sebillot, Claude Bendavid, Stephane Minvielle, Herve Avet-Loiseau, Olivier Decaux, and Caroline Moreau. “Prognostic Value of Involved/Uninvolved Free Light Chain Ratio Determined by Freelite and N Latex FLC Assays for Identification of High-Risk Smoldering Myeloma Patients.” Clinical Chemistry and Laboratory Medicine 57, no. 9 (August 27, 2019): 1397–1405. https://doi.org/10.1515/cclm-2018-1369.
Maura, Francesco, Niccolo Bolli, Nicos Angelopoulos, Kevin J. Dawson, Daniel Leongamornlert, Inigo Martincorena, Thomas J. Mitchell, et al. “Genomic Landscape and Chronological Reconstruction of Driver Events in Multiple Myeloma.” Nature Communications 10, no. 1 (August 23, 2019): 3835. https://doi.org/10.1038/s41467-019-11680-1.
Maura, Francesco, Andrea Degasperi, Ferran Nadeu, Daniel Leongamornlert, Helen Davies, Luiza Moore, Romina Royo, et al. “Author Correction: A Practical Guide for Mutational Signature Analysis in Hematological Malignancies.” Nature Communications 10, no. 1 (July 25, 2019): 3431. https://doi.org/10.1038/s41467-019-11468-3.
Munshi, Nikhil C., Sundar Jagannath, and Herve Avet-Loiseau. “Monoclonal Gammopathy May Be of Unpredictable Significance.” JAMA Oncology, July 18, 2019. https://doi.org/10.1001/jamaoncol.2019.1580.
Leleu, Xavier, Guillemette Fouquet, Valentine Richez, Stephanie Guidez, Alain Duhamel, Francois Machuron, Lionel Karlin, et al. “Carfilzomib Weekly plus Melphalan and Prednisone in Newly Diagnosed Transplant-Ineligible Multiple Myeloma (IFM 2012-03): A Phase I Trial.” Clinical Cancer Research : An Official Journal of the American Association for Cancer Research 25, no. 14 (July 15, 2019): 4224–30. https://doi.org/10.1158/1078-0432.CCR-18-3642.
Moreau, Philippe, Michel Attal, Cyrille Hulin, Bertrand Arnulf, Karim Belhadj, Lotfi Benboubker, Marie C. Bene, et al. “Bortezomib, Thalidomide, and Dexamethasone with or without Daratumumab before and after Autologous Stem-Cell Transplantation for Newly Diagnosed Multiple Myeloma (CASSIOPEIA): A Randomised, Open-Label, Phase 3 Study.” Lancet (London, England) 394, no. 10192 (July 6, 2019): 29–38. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(19)31240-1.
Maura, Francesco, Andrea Degasperi, Ferran Nadeu, Daniel Leongamornlert, Helen Davies, Luiza Moore, Romina Royo, et al. “A Practical Guide for Mutational Signature Analysis in Hematological Malignancies.” Nature Communications 10, no. 1 (July 5, 2019): 2969. https://doi.org/10.1038/s41467-019-11037-8.
Perrot, Aurore, Valerie Lauwers-Cances, Elodie Tournay, Cyrille Hulin, Marie-Lorraine Chretien, Bruno Royer, Mamoun Dib, et al. “Development and Validation of a Cytogenetic Prognostic Index Predicting Survival in Multiple Myeloma.” Journal of Clinical Oncology : Official Journal of the American Society of Clinical Oncology 37, no. 19 (July 1, 2019): 1657–65. https://doi.org/10.1200/JCO.18.00776.
Guillerey, Camille, Kyohei Nakamura, Andrea C. Pichler, Deborah Barkauskas, Sophie Krumeich, Kimberley Stannard, Kim Miles, et al. “Chemotherapy Followed by Anti-CD137 MAb Immunotherapy Improves Disease Control in a Mouse Myeloma Model.” JCI Insight 5 (June 13, 2019). https://doi.org/10.1172/jci.insight.125932.
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Neuzillet, Cindy, Annemilaï Tijeras-Raballand, Chanthirika Ragulan, Jérôme Cros, Yatish Patil, Matthieu Martinet, Mert Erkan, et al. “Inter- and Intra-Tumoural Heterogeneity in Cancer-Associated Fibroblasts of Human Pancreatic Ductal Adenocarcinoma.” The Journal of Pathology 248, no. 1 (May 2019): 51–65. https://doi.org/10.1002/path.5224.
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Thakurta, Anjan, Maria Ortiz, Pedro Blecua, Fadi Towfic, Jill Corre, Natalya V. Serbina, Erin Flynt, et al. “High Subclonal Fraction of 17p Deletion Is Associated with Poor Prognosis in Multiple Myeloma.” Blood 133, no. 11 (March 14, 2019): 1217–21. https://doi.org/10.1182/blood-2018-10-880831.
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Corre, Jill, and Herve Avet-Loiseau. “Risk-Based Therapeutic Strategies.” Cancer Journal (Sudbury, Mass.) 25, no. 1 (February 2019): 54–58. https://doi.org/10.1097/PPO.0000000000000352.
Richez, Valentine, Cecile Gruchet, Stephanie Guidez, Guillemette Fouquet, Isabelle Azais, Geraldine Durand, Vincent Javaugue, et al. “Carfilzomib Weekly 20/56 Mg/m(2) , Lenalidomide and Dexamethasone for Early Relapsed Refractory Multiple Myeloma.” American Journal of Hematology 94, no. 1 (January 2019): E17–20. https://doi.org/10.1002/ajh.25327.
Walker, Brian A., Konstantinos Mavrommatis, Christopher P. Wardell, T. Cody Ashby, Michael Bauer, Faith Davies, Adam Rosenthal, et al. “A High-Risk, Double-Hit, Group of Newly Diagnosed Myeloma Identified by Genomic Analysis.” Leukemia 33, no. 1 (January 2019): 159–70. https://doi.org/10.1038/s41375-018-0196-8.

LES MEMBRES DE L’ÉQUIPE

Thomas Richarme
Doctorant / PhD student
Amélie Cazes
Technicien de laboratoire / Laboratory Technician
Coralie Franck
Technicien de laboratoire / Laboratory Technician
Bineta Rigaud
Doctorant / PhD student
Pierre-Paul Axisa
Chercheur Post-Doctorant / Post-Doc researcher
Anaïs Schavgoulidze
Doctorant / PhD student
Luka Pavageau
Ingénieur de laboratoire / laboratory engineer
Celine Mazzotti
Ingénieur de laboratoire / laboratory engineer
Jill Corre
Hospitalo-Universitaire / University teacher hospital practitioner
Laure Buisson
Ingénieur de laboratoire / laboratory engineer
Corentin Pignon
Technicien de laboratoire / Laboratory Technician
Ludovic Martinet
Chercheur statutaire / permanent scientist
Eve Blanquart
Chercheur Post-Doctorant / Post-Doc researcher
Liliana Lucca
Chercheur Post-Doctorant / Post-Doc researcher
Marine Cuisinier
Technicien de laboratoire / Laboratory Technician
Marie-Véronique Joubert
Ingénieur de laboratoire / laboratory engineer
Nadege Constantin Carrié
Ingénieur de laboratoire / laboratory engineer
Rüçhan Ekren
Doctorant / PhD student
Aurore Perrot
Enseignant chercheur / University researcher

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MMIL https://www.crct-inserm.fr/mmil/ Thu, 26 Aug 2021 13:18:54 +0000 https://www.crct-inserm.fr/v2/?p=35375 L’article MMIL est apparu en premier sur Centre de Recherches en Cancérologie de Toulouse.

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MMIL

Maladie caractérisée par la multiplication de cellules cancéreuses dans la moelle osseuse, le myélome multiple touche chaque année en France environ 4000 nouveaux patients pour lesquels les traitements actuels ne permettent pas, dans la majorité des cas, d’obtenir une guérison complète.

Le projet MMIL poursuit l’objectif de mieux comprendre les mécanismes de reconnaissance et d’éradication des cellules cancéreuses par le système immunitaire. Ce projet de recherche s’appuie à la fois sur l’étude de modèles animaux porteurs de myélome et sur l’analyse de prélèvements de patients qui pourraient permettre d’augmenter la reconnaissance des cellules tumorales par les lymphocytes tueurs et d’améliorer l’efficacité des thérapies actuelles par des stratégies innovantes.

Le projet MMIL est coordonné par le Dr. Ludovic Martinet (équipe 13 du CRCT) et le Pr. Hervé Avet-Loiseau (Unité de Génomique du Myélome de l’IUCT-O). Il a reçu un soutien de 100 000 € de l’Institut Claudius Regaud / Institut Universitaire du Cancer de Toulouse-Oncopole.

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